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利用造血干細胞再生能力的關鍵蛋白
【字體: 大 中 小 】 時間:2014年12月12日 來源:生物通
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最近,加州大學洛杉磯分校(UCLA)的科學家首次發現一種蛋白質,在調節人造血干細胞如何復制的過程中,起著關鍵的作用。相關研究結果發表在最近的《Journal of Clinical Investigation》雜志。
生物通報道:最近,加州大學洛杉磯分校(UCLA)的科學家首次發現一種蛋白質,在調節人造血干細胞如何復制的過程中,起著關鍵的作用。
這一發現,為我們更好了解這個蛋白如何控制造血干細胞生長和再生,奠定了基礎,并能促使更有效治療方法的開發,用于許多不同的血液疾病和癌癥。
相關研究結果,由Eli和Edythe Broad再生醫學和干細胞研究中心(Eli & Edythe Broad Center of Regeerative Medicine & Stem Cell Reasearch)成員John Chute博士帶領,發表在最近的《Journal of Clinical Investigation》雜志。
造血干細胞(HSCs)是血液生成細胞,具有自我更新和產生血液系統所有分化細胞(充分發育的細胞)的卓越能力。HSC移植每年為成千上萬的患者提供了有效的治療方法。然而,移植的HSCs在它們到達人骨髓之后通過什么過程進行復制,我們知之甚少。在這項研究中,作者發現,一個細胞表面蛋白(稱為蛋白酪氨酸磷酸酶sigma,PTP-sigma),可調節稱為植入(engraftment)的關鍵過程,這個過程意指,在移植后HSCs如何開始生長并生產健康的血細胞。
本文第一作者、Chute實驗室研究生Mamle Quarmyne表明,PTP-sigma是在很大一部分小鼠和人類造血干細胞上產生(表達)的。她進一步表明,在小鼠中刪除PTP-sigma,可顯著增加HSCs植入移植后小鼠的能力。
在一項補充性研究中,Quarmyne表明,選擇不表達PTP-sigma的人全血HSCs,會致使移植后免疫缺陷小鼠中的HSC植入增加15倍。總之,這些研究表明,PTP-sigma可抑制正常的HSC植入能力,靶向阻斷HSC,可能會大大提高移植后小鼠和人類的HSC植入。
Chute及其同事進一步表明,PTP-sigma可通過抑制一個蛋白——RAC1(已知能促進移植后的HSC植入),來調節HSC的功能。
本文資深作者、UCLA血液學/腫瘤學和放射腫瘤學教授Chute稱:“這些發現具有巨大的治療潛力,因為我們確定了HSCs上的一個新受體——PTP-sigma,它可以專門作為一種手段,有效地提高移植HSCs在患者體內的植入。這種方法也可以加速接受化療和/或放療癌癥患者的血液系統恢復,因為這些手術也能抑制血液和免疫系統!
Chute的研究小組目前正與UCLA研究人員合作,檢測這些小分子特異性抑制血液干細胞上PTP-sigma的能力。如果這些研究是成功的,他們的目標是,在不久的將來將這些結果轉化為臨床試驗。
(生物通:王英)
延伸閱讀:造血干細胞發育不可或缺的蛋白
生物通推薦原文摘要:
Protein tyrosine phosphatase–σ regulates hematopoietic stem cell–repopulating capacity
Abstract:Hematopoietic stem cell (HSC) function is regulated by activation of receptor tyrosine kinases (RTKs). Receptor protein tyrosine phosphatases (PTPs) counterbalance RTK signaling; however, the functions of receptor PTPs in HSCs remain incompletely understood. We found that a receptor PTP, PTPσ, was substantially overexpressed in mouse and human HSCs compared with more mature hematopoietic cells. Competitive transplantation of bone marrow cells from PTPσ-deficient mice revealed that the loss of PTPσ substantially increased long-term HSC-repopulating capacity compared with BM cells from control mice. While HSCs from PTPσ-deficient mice had no apparent alterations in cell-cycle status, apoptosis, or homing capacity, these HSCs exhibited increased levels of activated RAC1, a RhoGTPase that regulates HSC engraftment capacity. shRNA-mediated silencing of PTPσ also increased activated RAC1 levels in wild-type HSCs. Functionally, PTPσ-deficient BM cells displayed increased cobblestone area–forming cell (CAFC) capacity and augmented transendothelial migration capacity, which was abrogated by RAC inhibition. Specific selection of human cord blood CD34+CD38–CD45RA–lin– PTPσ– cells substantially increased the repopulating capacity of human HSCs compared with CD34+CD38–CD45RA–lin– cells and CD34+CD38–CD45RA–lin–PTPσ+ cells. Our results demonstrate that PTPσ regulates HSC functional capacity via RAC1 inhibition and suggest that selecting for PTPσ-negative human HSCs may be an effective strategy for enriching human HSCs for transplantation.
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