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        玉米葉片發育的連續空間轉錄組揭示調控轉換機制

        《Plant Biotechnology Journal》:Serial Spatial Transcriptomes Reveal Regulatory Transitions in Maize Leaf Development

        【字體: 時間:2026年01月08日 來源:Plant Biotechnology Journal 10.5

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          本綜述系統總結了利用10× Genomics Visium系統優化的空間轉錄組技術,在玉米幼苗莖尖分生組織(SAM)及連續發育葉片中重建三維基因表達譜的研究。文章通過空間-時間轉錄組分析,識別了參與分生組織維持、葉原基起始、維管組織分化和細胞異質性的關鍵調控基因,并開發了從切片制備到數據處理的完整實驗流程。該研究為解析植物發育轉換、細胞類型特化和分化的分子事件提供了重要技術平臺和理論基礎。

          

        優化玉米幼苗莖尖切片構建空間轉錄組的技術流程

        研究團隊針對植物組織特點對10× Genomics Visium空間基因表達系統進行了技術優化。通過比較"先新鮮冷凍"和"先OCT浸泡"兩種冷凍保存方法,發現兩種方法均能良好保持RNA完整性(RIN值分別為9.2和9.4)。實驗證明甲基丁烷、甲醇、異丙醇、室溫孵育、染色染料、蛋白酶K或胃蛋白酶介導的透化處理等關鍵步驟對RNA質量無顯著影響,但胃蛋白酶在0.1N HCl中的孵育時間對RNA完整性具有時間依賴性影響。
        特別值得關注的是,研究團隊開發了"兩步OCT包埋"技術,通過先將組織樣品浸泡在稀釋的OCT中防止氣泡形成,精確定向后用最小量OCT進行冷凍固定,有效減少了細胞內冰晶形成。這種改良方法特別適用于復雜脆弱的SAM結構,確保了切片組織的完整性和mRNA捕獲效率。

        獲取發育中玉米葉片的連續空間轉錄組

        在實驗設計上,研究團隊選擇了玉米莖尖的橫切面作為研究對象,因為植物結構如SAM和葉原基在橫切面視圖中更容易區分。通過對72小時吸脹后的玉米幼苗進行解剖,每個生物學重復獲得3-4個從SAM頂端到其下方約108μm的連續橫切面,共獲得14個生物學重復的54個切片數據。
        技術流程包括冷凍切片、VT Slide顯微成像、測序文庫構建和Illumina短讀長測序。每個6.5×6.5mm捕獲區域可容納單個幼苗的3-4個莖尖橫切面,組織覆蓋斑點比例從18.86%到40.52%不等。測序數據顯示,每個斑點的平均讀數范圍從79828到155375,每個斑點檢測到的基因中位數從4623到8416,數據質量與哺乳動物組織數據集相當。

        空間轉錄組方法的高可靠性驗證

        通過整合14個數據集并進行歸一化處理,研究發現組織斑點根據結構域緊密聚集,可分為三個明顯組別:SAM和發育葉片、胚芽鞘以及胚芽鞘內維管組織。已知標記基因的表達模式驗證了該方法的可靠性,如Knotted-1(KN1)和NAC轉錄因子119(NAC119)主要在SAM斑點中表達,而Auxin Import Carrier 4(AIC4)和DNA-binding with one finger transcription factor 11(DOF11)在胚芽鞘維管中顯示主要或相對高表達。
        與90個通過探針原位測序(ISS)檢測的基因比較顯示,69個基因在兩種方法中呈現高度匹配的表達模式。此外,研究人員通過墊鎖探針原位雜交驗證了AIL6、ANT1、ANT3和TML1等基因的表達模式,結果與空間轉錄組譜基本一致。

        玉米發育莖尖的基因表達譜特征

        偽批量基因表達譜的主成分分析(PCA)顯示四個主要組別:SAM、發育葉片、胚芽鞘和胚芽鞘維管。層次聚類分析表明,胚芽鞘階段的基因表達譜最為獨特,與其他發育階段差異顯著。通過基因表達趨勢的層次聚類,研究人員識別了7個主要基因簇,反映了從未分化的SAM到各分化階段葉片的發育軌跡。
        基因本體(GO)富集分析揭示了三個主要生物學主題:簇1富含核心生物合成、基因表達和細胞組織相關術語,反映了分生組織域的快速細胞循環;簇6以共價染色質和組蛋白修飾為特征,表明細胞退出分生組織并承諾分化時的表觀遺傳重塑;簇7顯示防御、次級代謝和創傷反應特征,表明這些幼年保護組織中存在預期防御程序。

        發育中玉米莖尖細胞類型的鑒定與表征

        通過無監督聚類,研究團隊在玉米莖尖中識別出33個不同的簇,基于空間定位和獨特基因表達模式將其分類為12個主要超群。與發育葉片相關的簇被分類為"SAM_P4"、"leaf_meso"和"leaf_vein",分別代表從莖尖分生組織到P3-P4發育階段的細胞、P4和P5中的非維管葉肉和表皮細胞以及相同發育階段內的維管組織。
        值得注意的是,胚芽鞘表現出顯著的轉錄異質性,特別是在基本組織中。雖然該區域組織學上由形態統一的薄壁細胞組成,但轉錄組分析揭示了不同的分子域。研究團隊鑒定了"co_meso_polar"、"co_meso_ad"、"co_meso_nearvein"等分子域,以及代表向軸和背軸維管域的"co_vein_ad"和"co_vein_ab"。

        連續發育葉片中的基因表達順序

        研究發現,在"SAM和發育葉片"組中,結構域的組織順序為SAM、P1_P2、P3、P4和P5,忠實地反映了組織分化的順序和復雜程度。通過RNA速度和偽時間分析,研究人員證實了觀察到的基因表達轉換反映了玉米葉片的形態發育。盡管只有7%的總UMI讀數是新生轉錄本,但RNA速度估計仍顯著預測了從SAM到P5的核心發育軌跡。

        早期葉片發育的時間順序基因共表達網絡

        通過時間順序基因共表達網絡(TO-GCN)分析,研究團隊在空間轉錄組中識別了1265個轉錄因子(TF)基因,根據基因共表達(皮爾遜相關系數PCC>0.95)將其組織成13個層次水平。基因富集分析顯示特定模式:SAM在L1到L4水平有TF富集峰值;早期葉原基(P1-P2)在L5和L6;中期葉片發育(P3)在L7;更高級葉片發育(P4)在L9;相對成熟葉片階段(P5)在L9和L10。

        單細胞參考與空間圖譜的整合

        研究人員將已發表的玉米單細胞RNA測序數據集與空間轉錄組進行比較,發現26925個基因的偽批量表達譜具有強一致性(Spearman's ρ=0.80)。通過Harmony校正有效去除了批次特異性效應,單細胞RNA測序UMAP解析為對應于精細細胞身份的緊湊、批次混合的島嶼。相比之下,Visium UMAP將這種組織和細胞類型異質性表示為一個連續的雙葉流形,通過一個橋梁連接,對應于從SAM→P1/P2→P3→P4→P5的發育軸。

        候選TF調控因子指定莖尖分生組織和葉原基起始

        為鑒定參與SAM發育或葉原基分化的候選TF,研究人員比較了五個結構域之間的差異基因表達分析結果和TO-GCN的L1和L2水平中鑒定的TF,發現了30個共同基因。這些基因包括Delayed Flowering 1(DLF1)轉錄因子,其在空間轉錄組數據中的表達水平從SAM到P3非常高,但在P4顯著降低。
        通過三維重建技術,研究人員展示了基因表達沿莖尖遠端-近端軸的連貫模式。例如,NAC119和HB46在單個幼苗(VR03)的四個連續切片和合并這些切片的三維重建中顯示一致模式,證明了如何沿遠端-近端軸檢查表達。

        SAM或葉片發育中候選基因的功能特征

        研究團隊重點關注了15個在玉米莖尖分生組織和早期葉原基中表達的玉米GRF轉錄因子。基于系統發育樹中的兩個主要分支,這些ZmGRFs的表達模式被組織起來。為進行功能驗證,優先選擇ZmGRF6作為SAM富集的DEG;ZmGRF8通過層次聚類位于最早表達程序中;ZmGRF10在P4-P5顯示遠端峰值,將覆蓋范圍擴展到后期早期葉片發育。
        通過CRISPR/Cas9介導的誘變,研究人員在Setaria viridis中創建了這三個基因的orthologs突變體。這些突變導致移碼,引入提前終止密碼子,產生缺乏保守QLQ和WRC結構域的截短GRF蛋白。所有三個編輯品系均顯示SAM高寬比顯著降低,其中CRP-SvGRF6的影響最強。較小的SAM穹頂與降低的株高相關,表明枝條生長受限。
        與ZmGRF10的遠端(P4-P5偏向)表達模式一致,CRP-SvGRF10植株表現出葉長顯著減少,而葉寬不變;相比之下,CRP-SvGRF6和CRP-SvGRF8在這兩個性狀上與野生型無顯著差異。這些數據表明這三個GRFs是分生組織生長的強陽性調節因子,并將GRF10與早期葉外生長聯系起來,為從空間轉錄組分析推斷的階段和域特異性作用提供了實驗支持。
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