使用無需PAM的CRISPR-Cas12a系統結合引物延伸擴增技術對piRNAs進行靈敏檢測
《Sensors and Actuators B: Chemical》:Sensitive Detection of piRNAs Using PAM-Free CRISPR-Cas12a System Integrated with Primer Extension Amplification
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時間:2026年01月15日
來源:Sensors and Actuators B: Chemical 7.7
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CRISPR-Cas12a診斷平臺通過開發PAM-free的PF-PEA策略實現無PAM依賴的高靈敏度檢測,結合TMSD和PEA信號放大技術成功應用于乳腺癌標志物piRNA-36026檢測,靈敏度達0.86 pM,線性R2=0.9964。
陳翔|余妍|梁志剛|秦露露|徐冠宏|魏芳迪|楊靜|胡琴|岑瑤
南京醫科大學藥學院,中國江蘇省南京市211166
摘要
基于CRISPR-Cas12a的診斷平臺從根本上改變了核酸檢測的范式。然而,其廣泛應用仍受到原間隔序列(PAM)的限制。為了解決這一限制,我們開發了一種無PAM引物延伸擴增(PF-PEA)策略,該策略有效規避了對PAM的依賴性,同時保持了強大的檢測效果。該方法采用一種引物序列,該序列能夠在非目標鏈上進行聚合酶介導的延伸,從而連續再生無PAM的雙鏈DNA激活劑,其激活效率可與依賴PAM的系統相媲美。通過將PF-PEA與趾爪介導的鏈位移和引物延伸擴增結合,建立了一個級聯信號放大平臺,用于檢測乳腺癌生物標志物piRNA-36026,該平臺具有高靈敏度(LOD = 0.86 pM)和高線性(R2 = 0.9964)。這種創新方法不僅規避了PAM序列的限制,還顯示出作為多種核酸分析物的通用檢測平臺的廣泛潛力,包括DNA和RNA目標。
引言
PIWI相互作用RNA(piRNAs)是一類長度在24-31個核苷酸之間的小非編碼RNA[1]。這些piRNAs最初被發現在生殖細胞中高度表達,并具有抑制轉座元件的能力,從而保持基因組的完整性[2]。這種沉默機制在保護基因組免受配子發生和生育過程中由轉座子引起的損傷方面起著重要作用[3]。此外,已有研究表明,piRNAs在體細胞中廣泛表達,并通過調節轉錄基因沉默、翻譯調控、mRNA穩定性、維持干細胞功能以及與多種蛋白質相互作用等過程發揮調控作用[4],[5]。特別是,piRNAs特異性地與Argonaute蛋白亞家族的PIWI蛋白結合,形成piRNA相關沉默復合體(piRISC),以執行生物學功能[6]。PIWI-piRNA通路在轉座元件的沉默、端粒保護復合體的組裝、胚胎發育的調控以及生殖細胞內基因組的穩定性和完整性的維持中具有重要意義[7],[8],[9]。新興證據表明,piRNAs與多種惡性腫瘤有關,包括胃癌[10],[11]、腎癌[12]、前列腺癌[13]、乳腺癌[14],[15]和結直腸癌[16],以及多種疾病,如生殖系統[17]、心血管[18],[19]和神經系統[20]疾病。值得注意的是,piRNAs在人體體液中可被檢測到,在血清中尤其豐富[21],且形式非常穩定[22]。因此,piRNAs是開發非侵入性診斷檢測方法的優秀生物標志物。
piRNAs的檢測傳統上使用微陣列分析[23]、下一代測序[24]和Northern印跡[25]等方法進行。然而,這些方法存在一些技術限制,如需要大量樣本、特異性較低和靈敏度中等。相比之下,聚合酶鏈反應(PCR)[26]提供了更高的piRNA定量靈敏度,但它需要復雜的逆轉錄步驟來從piRNA模板生成互補DNA。為了解決這些挑戰,基于熒光的新生物傳感平臺已被開發出來。這些先進的傳感器通常結合了核酸擴增技術,包括:雜交鏈反應(HCR)[27]、催化發夾組裝(CHA)[28]、滾環擴增(RCA)[29]。結合熒光技術和核酸擴增技術的生物傳感器已有效實現了對piRNAs的靈敏檢測。
CRISPR-Cas(規律間隔短回文重復序列,CRISPR相關蛋白)系統作為一種變革性技術,在基因編輯和分子診斷中發揮了重要作用,這歸功于其無與倫比的精確識別和特異性[30]。特別是CRISPR-Cas12a變體因其獨特的核酸酶特性而受到了大量研究關注。典型的CRISPR-Cas12a系統包括三個關鍵組成部分:CRISPR RNA(crRNA)、Cas12a效應蛋白和激活分子[31]。當crRNA識別到激活分子后,Cas12a復合體會發生構象激活,表現出對結合的激活分子的順式切割以及對非特異性單鏈DNA(ssDNA)分子的無差別切割活性[32],[33]。這種獨特的兩功能切割能力使Cas12a在分析應用中具有顯著優勢。目前的激活劑設計主要分為兩種形式:單鏈激活劑(ss-activators)[34]和雙鏈激活劑(ds-activators)[31]。然而,每種形式都有明顯的局限性:ss-activators的靶標特異性較差,而ds-activators通常需要PAM序列的存在,從而限制了其廣泛應用[35]。有趣的是,也有報道稱PAM序列對ds-activator的解旋貢獻很小,在隨后的切割過程中作用不大[32]。為了規避與PAM相關的限制,已經開發了幾種創新策略:(1) 在ds-activators中引入氣泡結構[36]或切口PAM序列[37]以降低雙鏈的結合親和力,從而便于其解旋和crRNA與目標鏈(TS)的結合;(2) 通過高溫或堿性溶液解旋ds-activators[38],或用Lambda外切酶消化非目標鏈(NTS),然后以ss-activator的形式激活Cas12a;(3) 設計獨立于PAM的發夾結構ds-activators[40],以激活Cas12a;(4) 實施帶有趾爪介導的鏈位移(TMSD)[35],[41]能力的粘性末端ds-activators,以識別crRNA并激活Cas12a;(5) 使用二硫蘇糖醇(DTT)來緩解PAM序列的限制[42]。
很少有研究人員嘗試直接使用未經修飾的無PAM ds-activators來激活Cas12a。因此,我們系統地研究了無PAM ds-activators用于Cas12a激活的可行性。實驗結果表明,無PAM ds-activators也可以激活Cas12a。比較分析顯示,在較低的激活劑濃度下,無PAM ds-activators的激活效率明顯低于含PAM的激活劑,而在較高激活劑濃度下這種差異減小。為了彌補激活效率的差異,我們開發了一種新的擴增策略,其中通過Klenow Fragment(KF)聚合酶介導的延伸,在NTS上連續再生無PAM ds-activators。這種方法使無PAM ds-activators能夠達到與含PAM變體相當的激活效率。為了進一步提高無PAM CRISPR-Cas12a系統的檢測靈敏度,通過將TMSD與引物延伸擴增結合,建立了一種級聯信號放大方法。目前,CRISPR-Cas12a系統在piRNAs檢測中的應用仍然很少探索,盡管它們已被廣泛用于檢測microRNAs(miRNAs)等生物標志物。在這里,我們利用基于CRISPR-Cas12a的級聯信號放大技術超靈敏地檢測了乳腺癌生物標志物piRNA-36026,顯示出顯著的檢測能力提升,同時完全不受PAM序列要求的限制。
材料與試劑
所有寡核苷酸(如支持信息表S1-S2所示)由上海 Sangon Biotechnology Co.; Ltd.(中國上海)合成和純化。LbaCas12a核酸酶(Cpf1)購自Novoprotein Scientific Inc.(中國上海)。Klenow Fragment(3'→5' exo-)購自Vazyme Biotech Co.; Ltd.(中國南京)。dNTP購自上海 Sangon Biotechnology Co., Ltd(中國上海)。所有實驗用水均通過
無PAM dsDNA激活劑介導的Cas12a激活
為了規避PAM要求的限制,系統評估了無PAM ds-activators對Cas12a核酸酶活性的激活效率。通過測量Cas12a對FQ報告探針的轉切割活性產生的熒光信號來定量評估激活效率。圖1A展示了三種不同的激活模式:ss-activators、含PAM序列的ds-activators和不含PAM序列的ds-activators。
結論
總之,我們發現未經修飾的無PAM ds-activators仍能誘導Cas12a核酸酶的激活,盡管效率低于傳統的ss-activators和含PAM的ds-activators。為了彌補無PAM ds-activators的激活效率不足,我們開發了PF-PEA策略。該方法將引物序列納入Cas12a激活系統中,從而實現無PAM ds-activators的連續生成
CRediT作者貢獻聲明
余妍:資源、方法學、正式分析。陳翔:撰寫——原始草稿、方法學、調查、正式分析、數據管理。秦露露:驗證、資源、正式分析。梁志剛:資源、正式分析、概念化。徐冠宏:驗證、監督、資源。楊靜:驗證、監督、資源。魏芳迪:驗證、監督、資源。岑瑤:撰寫——審閱與編輯、監督、概念化。胡琴:撰寫——審閱與
利益沖突聲明
作者聲明他們沒有已知的可能會影響本文所述工作的競爭性財務利益或個人關系。
致謝
本工作得到了國家自然科學基金(編號81973283、61775099、21705080)、江蘇省自然科學基金(編號BK20221304、BK20171487、BK20171043)、江蘇省高等學校“藍色計劃”基金、藥用資源化學與分子工程國家重點實驗室(廣西師范大學)(CMEMR2024-B09)以及化學與生物傳感國家重點實驗室(湖南)的開放資金的支持
陳翔目前是南京醫科大學攻讀碩士學位的研究生,專注于CRISPR/Cas系統的應用。她于2023年在南京醫科大學獲得了學士學位。
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