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        鑒定并過表達編碼糖醇轉運蛋白和代謝酶的基因,以加速酵母(Kluyveromyces marxianus)對這些物質的利用

        《Journal of Bioscience and Bioengineering》:Identification and overexpression of genes encoding sugar alcohol transporter and metabolic enzymes for accelerated utilization in the yeast Kluyveromyces marxianus

        【字體: 時間:2026年01月17日 來源:Journal of Bioscience and Bioengineering 2.9

        編輯推薦:

          通過CRISPR-Cas9和NHEJ方法敲除釀酒酵母Kluyveromyces marxianus的候選轉運酶基因,發現KmSAT1編碼山梨醇轉運蛋白,KmXYL2和KmSOU2分別負責山梨醇和甘露醇的代謝。過表達這些基因顯著提升對糖醇的利用效率,縮短生長滯后期,光密度高于葡萄糖培養基。

          
        江部智史(Satoshi Ebe)、中村仁美(Hitomi Nakamura)、松田光成(Mitsunari Matsuda)、寺內由紀(Yuki Terauchi)、赤田麟司(Rinji Akada)、星田久(Hisashi Hoshida)
        山口大學科學技術創新研究生院應用化學系,日本宇部市常磐臺2-16-1,郵編755-8611
        酵母Kluyveromyces marxianus能夠吸收多種糖類,包括山梨醇和甘露醇。然而,包括糖轉運蛋白在內的糖類利用代謝途徑仍有待闡明。為了識別這些基因,我們首先使用一種新開發的非同源末端連接(NHEJ)介導的基因破壞方法,結合CRISPR-Cas9系統進行靶向切割,共篩選出13個候選轉運蛋白基因。雖然大多數突變體在各種糖培養基中表現出生長缺陷不明顯,但KmMLEV2025基因(命名為KmSAT1)的突變體在山梨醇或甘露醇培養基中均無法生長,這表明該基因編碼一種糖醇轉運蛋白。接下來,我們研究了對糖醇代謝至關重要的脫氫酶基因,因為糖醇需要通過脫氫酶轉化為果糖。已知KmXyl2p是一種木糖醇脫氫酶,因此它也是山梨醇脫氫酶的候選基因。KmXYL2的突變導致菌株在山梨醇培養基中生長受阻,而在甘露醇培養基中則無此現象。通過進一步破壞多個基因,我們發現了甘露醇脫氫酶:KmSOU2(被注釋為山梨糖還原酶)的突變導致菌株在甘露醇培養基中生長受阻。這些基因的過表達有助于更有效地利用糖醇。過表達KmSAT1但不表達脫氫酶基因的菌株能夠立即開始生長,而野生型菌株則需要幾天時間才能生長。此外,山梨醇和甘露醇培養基中的最終細胞光密度均高于葡萄糖培養基。這些結果表明,過表達糖醇轉運蛋白是生物技術應用中的有效策略。

        部分內容摘要

        酵母菌株與培養基

        本研究中使用的K. marxianus菌株列于表S1中。酵母培養使用了YPD培養基(1%酵母提取物、2%多肽和2%葡萄糖)、YPGal培養基(YPD培養基中的葡萄糖被2%半乳糖替代)以及SD培養基(2%葡萄糖、0.17%酵母氮源(不含氨基酸和硫酸銨)、0.5%硫酸銨以及額外的營養素,包括亮氨酸、甲硫氨酸、賴氨酸、組氨酸、色氨酸、腺嘌呤半硫酸鹽和尿嘧啶)。

        利用CRISPR-Cas9和NHEJ介導的標記基因插入進行基因破壞

        當含有KmADE2基因的質粒pUDP082被引入K. marxianus菌株后,部分轉化菌落呈現紅色,表明KmADE2基因發生了突變(數據未顯示)。如果切割位點發生突變,后續的CRISPR-Cas9介導的切割和DNA插入將無法進行。為避免在引入CRISPR-Cas9質粒的過程中發生突變,我們將表達Cas9的啟動子進行了修改。

        利用CRISPR-Cas9和NHEJ進行基因破壞

        在本研究中,我們確定了K. marxianus吸收山梨醇和甘露醇所需的轉運蛋白和脫氫酶。我們采用了一種新開發的基因破壞方法來識別這些基因。該方法通過CRISPR-Cas9系統進行切割,將沒有同源序列的標記基因整合到目標基因中。

        CRediT作者貢獻聲明

        江部智史:撰寫、審稿與編輯、數據可視化、實驗驗證、數據分析。中村仁美:實驗研究。松田光成:實驗研究。寺內由紀:撰寫、審稿與編輯。赤田麟司:撰寫、審稿與編輯。星田久:撰寫、原始草稿撰寫、項目管理、資金申請、概念構思。

        致謝

        我們感謝Jean-Marc Daran博士提供質粒pUDP082,幫助我們開發了本研究中的新型CRISPR-Cas9系統。本研究得到了JST SPRING(資助編號JPMJSP2111)、NAGASE科學技術基金會和大阪發酵研究所(資助編號LA-2023-018)的支持。同時,我們也感謝山口大學基因研究中心提供的分析儀器。作者聲明不存在利益沖突。
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