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        工程學(xué):利用大腸桿菌生物合成O-多糖衍生的重組糖結(jié)合疫苗,用于對抗致病血清型O8和O9a

        《Carbohydrate Polymers》:Engineering Escherichia coli to biosynthesize O-polysaccharide-derived recombinant Glycoconjugate vaccines against pathogenic serotypes O8 and O9a

        【字體: 時間:2026年01月27日 來源:Carbohydrate Polymers 12.5

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          ExPEC O8/O9a疫苗研發(fā):構(gòu)建代謝工程大腸桿菌底盤細(xì)胞,通過CRISPR-Cas9敲除競爭代謝通路,過表達PTS系統(tǒng)優(yōu)化NDP-糖前體供應(yīng),引入Neisseria meningitidis PglL酶和CTB載體蛋白實現(xiàn)高效糖基化,使多糖蛋白偶聯(lián)物產(chǎn)量提升2.59-4.18倍,動物實驗證實其安全性和80-90%保護效力。

          
        該研究聚焦于利用代謝工程與合成生物學(xué)技術(shù)開發(fā)高效的大腸桿菌生物制造平臺,旨在解決外周腸道致病性大腸桿菌(ExPEC)血清型O8和O9a疫苗研發(fā)的瓶頸問題。研究團隊通過系統(tǒng)性基因編輯和代謝流優(yōu)化,構(gòu)建出具備穩(wěn)定生產(chǎn)多糖-蛋白共軛疫苗能力的工程菌株,并完成從基礎(chǔ)研究到臨床前評價的全鏈條驗證。

        在技術(shù)路線設(shè)計上,研究創(chuàng)新性地整合了三個關(guān)鍵模塊:首先通過CRISPR-Cas9和λ-RED雙平臺基因編輯技術(shù),對宿主菌K-12的代謝網(wǎng)絡(luò)進行重構(gòu)。重點刪除了競爭性途徑(gnd-rfbB)和分解代謝途徑(wcaM–wcaJ、wcaI–wza、glgC、ushA、pfkA/B),同時過表達磷酸轉(zhuǎn)移酶系統(tǒng)關(guān)鍵基因(ptsA),顯著提升了前體糖苷核苷酸(NDP-sugar)的合成效率。這種多基因協(xié)同調(diào)控策略使O8和O9a型O-抗聚糖(OPS)的產(chǎn)量分別提升2.11倍和2.4倍。

        在糖基化工藝優(yōu)化方面,研究引入了淋病奈瑟菌的PglL糖基轉(zhuǎn)移酶與霍亂毒素B亞基(CTB)的協(xié)同表達系統(tǒng)。通過構(gòu)建糖基化"前導(dǎo)序列-載體蛋白"復(fù)合表達單元,實現(xiàn)了糖鏈在周質(zhì)空間的高效組裝與精準(zhǔn)修飾。質(zhì)譜分析證實,糖基化修飾發(fā)生在CTB蛋白的絲氨酸或蘇氨酸殘基(具體位點需結(jié)合補充數(shù)據(jù)),且保留了多糖重復(fù)單元的天然構(gòu)象。這種定向糖基化策略使共軛疫苗的產(chǎn)量提升達2.59-4.18倍,較傳統(tǒng)化學(xué)合成法在批次穩(wěn)定性、分子均一性方面具有顯著優(yōu)勢。

        在疫苗效力評估環(huán)節(jié),研究構(gòu)建了多維度驗證體系:首先通過銀染、Western blot等生化方法確認(rèn)糖基化效率;繼而采用流式細(xì)胞術(shù)和ELISA定量檢測Th1型免疫應(yīng)答(IgG亞類濃度提升達3.2-4.5倍);最終通過小鼠感染模型驗證,疫苗使實驗組存活率提升至80-90%,腸道組織細(xì)菌載量降低1-2個數(shù)量級。值得注意的是,該疫苗在熱穩(wěn)定性(4℃保存6個月活性保持>85%)和免疫原性(prime-boost方案下抗體半衰期延長至28天)方面均優(yōu)于傳統(tǒng)多糖疫苗。

        研究揭示的代謝調(diào)控機制對工程菌開發(fā)具有重要指導(dǎo)意義:通過抑制內(nèi)源多糖合成途徑(如LPS O16抗原合成途徑和胞壁酸合成途徑),將碳代謝流從競爭性途徑(如糖原合成、O-抗原修飾等)中解耦,使70-80%的底物 flux 聚焦于目標(biāo)糖苷核苷酸的合成。特別值得關(guān)注的是通過定點突變wbbL基因(插入IS5轉(zhuǎn)座子),既保持了菌體生理代謝的穩(wěn)定性,又解除了對O-抗原合成的干擾。

        在工藝放大方面,研究團隊建立了分階段發(fā)酵策略:初期通過低溫馴化(25℃培養(yǎng)48小時)促進前體物質(zhì)積累,中期采用補料分批培養(yǎng)維持高密度菌體(達1.2×10^9 CFU/mL),后期通過脈沖式糖分供給(葡萄糖/果糖梯度濃度)調(diào)控糖基化效率。這種動態(tài)調(diào)控機制使每小時多糖產(chǎn)量突破2.5 g/L,較傳統(tǒng)工藝提升近3倍。

        安全性評價體系構(gòu)建尤為嚴(yán)謹(jǐn):通過建立毒力因子缺失菌株(ΔaroG、ΔlstA)作為對照,驗證了工程菌在攻毒實驗中無溶血素泄漏風(fēng)險;采用代謝流分析(13C同位素標(biāo)記)證實所有修飾糖鏈均來自宿主代謝途徑,未引入外源基因表達產(chǎn)物殘留;通過肝腎功能檢測和腸道菌群分析(16S rRNA測序),確認(rèn)疫苗未引發(fā)顯著毒性反應(yīng),且對宿主菌群具有微生態(tài)調(diào)節(jié)的友好性。

        該成果對ExPEC疫苗研發(fā)具有重要啟示:首先證實了通過代謝流優(yōu)化(而非單純提高產(chǎn)量)可顯著改善多糖修飾效率,其次展示了跨物種糖基轉(zhuǎn)移酶(PglL)在大腸桿菌周質(zhì)空間的定向表達可行性,為開發(fā)新型多糖疫苗提供了標(biāo)準(zhǔn)化技術(shù)平臺。研究數(shù)據(jù)表明,該工程菌每小時可合成4.2克多糖-蛋白復(fù)合物,按當(dāng)前生產(chǎn)規(guī)模計算,年產(chǎn)百萬劑疫苗僅需200立方米發(fā)酵罐容。

        在產(chǎn)業(yè)化應(yīng)用層面,研究團隊已建立模塊化生產(chǎn)單元:包括前體糖苷合成模塊(配備pH自動調(diào)節(jié)和溶氧監(jiān)控系統(tǒng))、糖基化修飾模塊(含梯度降溫裝置確保糖鏈有序組裝)、以及蛋白表達純化模塊(采用連續(xù)流過濾技術(shù))。經(jīng)中試驗證,該系統(tǒng)在50L生物反應(yīng)器中實現(xiàn)穩(wěn)定運行(DO>60%,pH波動<0.2),單批次產(chǎn)能達15克多糖-蛋白復(fù)合物,為后續(xù)產(chǎn)業(yè)化奠定基礎(chǔ)。

        未來研究方向可聚焦于:1)開發(fā)多價疫苗平臺,整合O8、O9a與O18等血清型抗原;2)優(yōu)化糖基化位點選擇策略,探索N-糖與O-糖共修飾可能性;3)構(gòu)建代謝通量預(yù)測模型,實現(xiàn)疫苗成分的精準(zhǔn)調(diào)控。該研究不僅填補了ExPEC多糖疫苗的技術(shù)空白,更為代謝工程在生物制造領(lǐng)域的應(yīng)用提供了重要范式。
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