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        可現(xiàn)場部署的CRISPR-Cas變體,用于快速檢測植物病原體

        《Plant Science》:Field-deployable CRISPR-Cas variants for rapid on-site detection of plant pathogens

        【字體: 時間:2026年02月07日 來源:Plant Science 4.1

        編輯推薦:

          植物病害快速檢測技術(shù);CRISPR-Cas12a;側(cè)流試紙;Cas13a RT-RPA;電化學(xué)傳感器;便攜式診斷平臺|

          
        希曼舒·薩伊尼(Himanshu Saini)|喬蒂·亞達夫(Jyoti Yadav)|沙拉德·潘迪(Sharad Pandey)|阿南德·庫馬爾(Anand Kumar)|迪帕克·南達(Deepak Nanda)|沙拉德·薩昌(Sharad Sachan)|吉萬·喬蒂·考希克(Jeevan Jyoti Kaushik)
        印度北阿坎德邦德赫拉杜恩(Dehradun)德夫布米大學(xué)(Dev Bhoomi Uttarakhand University)農(nóng)業(yè)學(xué)院,郵編248007

        摘要

        快速、可在田間使用的診斷方法對于有效的植物病害管理至關(guān)重要。盡管CRISPR-Cas系統(tǒng)具有高靈敏度和可編程性,但由于缺乏標準化、實用的工作流程,其在現(xiàn)場植物病原體檢測中的應(yīng)用受到了限制。本文介紹了使用Cas12a、Cas13a和微型Cas變體實現(xiàn)的CRISPR-Cas診斷方案,用于快速檢測主要植物病原體。文中描述了三種適用于田間的檢測方法:(i) 用于DNA病原體的RPA-Cas12a側(cè)向流動檢測方法;(ii) 用于RNA病毒的Cas13a RT-RPA檢測方法;(iii) 適用于便攜式實驗室的無擴增Cas12a電化學(xué)生物傳感器。每種方案都包括樣品制備步驟、試劑配方、孵育條件及故障排除指南。在各種平臺上,檢測限達到1-100拷貝/μL?1,檢測時間僅需20-45分鐘,顯示出與傳統(tǒng)基于PCR的診斷方法相當(dāng)?shù)姆治鲮`敏度,同時顯著縮短了檢測時間并提高了現(xiàn)場應(yīng)用性。我們還討論了實際操作中的限制因素,如樣品抑制劑、試劑穩(wěn)定性及生物安全問題,并提出了相應(yīng)的解決方案。這些標準化的工作流程將CRISPR診斷技術(shù)的最新進展轉(zhuǎn)化為可重復(fù)、適用于田間的工具,用于植物健康監(jiān)測和快速病害檢測。

        引言

        植物病害繼續(xù)對全球糧食生產(chǎn)構(gòu)成嚴重且持續(xù)的威脅。在主要種植系統(tǒng)中,病毒、細菌、真菌、線蟲和卵菌等病原體每年導(dǎo)致20-40%的產(chǎn)量損失,經(jīng)濟損失達數(shù)百億美元(CABI, 2025; FAO, 2025; Savary等人, 2019)。這些損失不僅削弱了農(nóng)業(yè)生產(chǎn)能力,還危及糧食安全、農(nóng)村生計和國際貿(mào)易。氣候變化導(dǎo)致的病原體流行趨勢、植物材料全球流動以及高致病性病原體的快速進化進一步加劇了風(fēng)險,迫切需要早期、準確的病害檢測(Chaloner等人, 2021)。
        及時識別植物病原體是有效管理病害、根除病害和實施檢疫的關(guān)鍵。傳統(tǒng)的診斷方法如聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)、定量PCR(qPCR)、酶聯(lián)免疫吸附測定(ELISA)和環(huán)介導(dǎo)等溫擴增(LAMP)長期以來一直是植物病原體檢測的核心。雖然這些實驗室技術(shù)具有高分析靈敏度和特異性,但在非控制環(huán)境下使用時存在諸多實際限制。PCR和qPCR需要熱循環(huán)儀、不間斷電源和受過培訓(xùn)的人員,因此不適合快速田間應(yīng)用(Mumford等人, 2016)。ELISA雖然簡單且成本低廉,但通常缺乏早期檢測低滴度感染所需的靈敏度(Ward等人, 2004)。LAMP提供了更便攜的等溫擴增方式,但其復(fù)雜的引物設(shè)計和偶爾出現(xiàn)的假陽性反應(yīng)限制了其在多變田間條件下的可靠性(Notomi等人, 2015)。
        近年來,CRISPR-Cas系統(tǒng)作為分子診斷的多功能平臺嶄露頭角,利用其天然的序列特異性核酸識別能力。第二類CRISPR效應(yīng)子如Cas12a、Cas12b、Cas13a和較小的Cas蛋白(例如Cas12f/Cas14)具有獨特的生化特性,可實現(xiàn)對DNA或RNA目標的快速敏感檢測。Cas12型酶在結(jié)合目標后能識別DNA序列并觸發(fā)附近單鏈DNA的報告基因的切割,產(chǎn)生可見信號(Chen等人, 2018)。類似地,Cas13酶能識別RNA并激活強效的RNase活性,通過熒光或側(cè)向流動檢測方法檢測植物RNA病毒(Gootenberg等人, 2017)。微型Cas變體(如Cas12f和Cas14)體積小巧、PAM(保護性寡核苷酸)要求簡單,且適應(yīng)資源匱乏的環(huán)境,使其成為便攜式診斷設(shè)備的理想候選者(Harrington等人, 2018)。
        這些特性推動了新一代基于CRISPR的診斷平臺的發(fā)展,包括DETECTR(Cas12a)、SHERLOCK(Cas13a)、HOLMES(Cas12a)和FELUDA(FnCas9),這些平臺已成功應(yīng)用于人類、獸醫(yī)和環(huán)境檢測領(lǐng)域。植物病理學(xué)也從中受益:最新研究表明,基于Cas13a的檢測方法可用于早期檢測植物RNA病毒(Karimi等人, 2025),基于Cas12a的工作流程可用于檢測如Alternaria等真菌病原體(Shaizadinova等人, 2025),以及集成智能手機的RPA-Cas12a系統(tǒng)用于檢測Phytophthora infestans(Zhao等人, 2025)。這些發(fā)現(xiàn)凸顯了CRISPR診斷技術(shù)在克服傳統(tǒng)工具局限性方面的潛力,提供了快速、等溫、用戶友好的檢測方法,適用于現(xiàn)場使用。
        盡管取得了這些進展,但仍存在一個主要障礙:針對植物病原體的CRISPR-Cas診斷方法很少以完整的、可復(fù)制的方案形式呈現(xiàn)。大多數(shù)已發(fā)表的研究僅展示了概念驗證,但常省略了關(guān)鍵的操作細節(jié),如適用于田間的樣品提取、試劑穩(wěn)定性、孵育條件、側(cè)向流動結(jié)果的解讀、故障排除和質(zhì)量控制步驟,而這些步驟對于植物健康專業(yè)人員的實際應(yīng)用至關(guān)重要。正如該領(lǐng)域的研究人員所指出的,缺乏可實施的方案限制了CRISPR檢測方法從實驗室原型向真正用于植物病害監(jiān)測、檢疫篩查和快速田間診斷工具的轉(zhuǎn)化。
        為解決這一差距,本文提供了標準化、適用于田間的CRISPR-Cas診斷工作流程,專為資源有限和現(xiàn)場條件設(shè)計。我們開發(fā)了三種可實施的檢測方案:
      3. 1.
        用于DNA病原體(如細菌和真菌)的RPA-Cas12a側(cè)向流動檢測方法,
      4. 2.
        用于RNA病毒的快速Cas13a RT-RPA檢測方法,以及
      5. 3.
        適用于便攜式或移動實驗室的無擴增Cas12a電化學(xué)生物傳感器。
      6. 每種工作流程都配有詳細的步驟指南、試劑配方、孵育條件、樣品制備方法、故障排除指南、試劑穩(wěn)定策略以及集成選項(如基于智能手機的讀數(shù))。通過將基于CRISPR的檢測方法從概念驗證轉(zhuǎn)化為實際操作方法,本文旨在加速診斷實驗室、推廣網(wǎng)絡(luò)、植物檢疫檢查員和從事植物病害監(jiān)測的研究團隊的采用。

        材料與方法

        本研究開發(fā)并優(yōu)化了三種基于CRISPR-Cas的診斷工作流程,用于快速、可在田間使用的植物病原體檢測。所有方案均經(jīng)過標準化處理,以確保在不同環(huán)境條件下的可重復(fù)性,并解決了實際應(yīng)用和可訪問性的問題。工作流程包括:(i) 用于DNA病原體的重組酶聚合酶擴增(RPA)-Cas12a側(cè)向流動檢測(LFA);(ii) 基于Cas13a的RT-RPA檢測方法用于

        三種可田間應(yīng)用的CRISPR-Cas診斷工作流程的建立

        我們成功開發(fā)并優(yōu)化了三種互補的基于CRISPR的診斷工作流程:RPA-Cas12a側(cè)向流動檢測方法、Cas13a RT-RPA熒光檢測方法以及無擴增的Cas12a電化學(xué)生物傳感器,每種方法均針對不同類型的植物病原體和不同的操作環(huán)境進行了優(yōu)化。(表1)總結(jié)了每種工作流程的診斷目的、核心生化機制和配置。如圖1所示,

        討論

        本研究提出了一套三種可田間應(yīng)用的CRISPR-Cas診斷工作流程,以滿足植物病害監(jiān)測的實際需求。通過整合RPA-Cas12a側(cè)向流動檢測、Cas13a RT-RPA熒光檢測和無擴增的Cas12a電化學(xué)生物傳感器,我們展示了一個統(tǒng)一而靈活的框架,適用于多種植物樣本和操作環(huán)境。綜合結(jié)果表明,基于CRISPR的技術(shù)

        優(yōu)勢

        本研究開發(fā)的診斷工作流程為植物病害監(jiān)測提供了多項實質(zhì)性優(yōu)勢。其主要優(yōu)勢在于利用了Cas12a和Cas13a酶的天然生化特性進行設(shè)計。如前所述,Cas12a的dsDNA觸發(fā)型ssDNA切割和Cas13a的RNA靶向轉(zhuǎn)RNase激活機制使得檢測系統(tǒng)具有高度靈敏性和多功能性。這一機制基礎(chǔ)確保了每種

        結(jié)論

        本研究建立了一套穩(wěn)健且實用的基于CRISPR-Cas的診斷工作流程,適用于現(xiàn)場植物病原體檢測。通過整合RPA-Cas12a側(cè)向流動檢測、Cas13a RT-RPA熒光檢測和無擴增的Cas12a電化學(xué)平臺,我們證明了CRISPR技術(shù)可以高效轉(zhuǎn)化為便攜式、試劑穩(wěn)定的格式,適用于田間應(yīng)用,同時不犧牲分析靈敏度或特異性。

        未引用的參考文獻

        (Chen等人, (2023)

        資助

        本研究未獲得公共部門、商業(yè)機構(gòu)或非營利組織的任何特定資助。

        CRediT作者貢獻聲明

        希曼舒·薩伊尼(Himanshu Saini):撰寫 – 審稿與編輯;撰寫 – 原稿。沙拉德·潘迪(Sharad Pandey):撰寫 – 審稿與編輯。喬蒂·亞達夫(Jyoti Yadav):撰寫 – 審稿與編輯;可視化。沙拉德·薩昌(Sharad Sachan):撰寫 – 審稿與編輯。阿南德·庫馬爾(Anand Kumar):數(shù)據(jù)管理;概念構(gòu)思。迪帕克·南達(Deepak Nanda):撰寫 – 審稿與編輯。吉萬·喬蒂·考希克(Jeevan Jyoti Kaushik):監(jiān)督;資源協(xié)調(diào)。

        利益沖突聲明

        作者聲明沒有已知的經(jīng)濟或非經(jīng)濟利益沖突。

        致謝

        我要感謝所有合作者的貢獻。

        利益沖突聲明

        作者聲明沒有可能影響本文研究的已知經(jīng)濟或個人關(guān)系。
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