通過磁珠限制的催化發(fā)夾結(jié)構(gòu)實現(xiàn)超靈敏的miRNA檢測,該結(jié)構(gòu)能夠促進轉(zhuǎn)錄驅(qū)動的crRNA組裝以及CRISPR/Cas12a的激活
《Biosensors and Bioelectronics》:Ultrasensitive miRNA detection via magnetic bead-confined catalytic hairpin assembly enabling transcription-driven crRNA assembly and CRISPR/Cas12a activation
編輯推薦:
CRISPR/Cas12a結(jié)合催化發(fā)夾組裝(CHA)通過磁珠受限平臺實現(xiàn)轉(zhuǎn)錄驅(qū)動crRNA重裝與Cas12a激活,顯著提升miRNA檢測靈敏度至65.3 aM,并成功應(yīng)用于腫瘤細(xì)胞系和血清樣本檢測,同時整合側(cè)流層析法增強臨床實用性。
潘明曦 | 呂夢梅 | 倪銀剛 | 蘇梅 | 趙成軍 | 梅如宇 | 英展明
教育部環(huán)境友好化學(xué)與應(yīng)用重點實驗室;湖南師范大學(xué)化學(xué)學(xué)院綠色有機合成與應(yīng)用重點實驗室,湘潭,411105,中國
摘要
CRISPR/Cas12a與催化發(fā)夾組裝(CHA)的結(jié)合是一種主要依靠CHA生成dsDNA激活劑以直接激活Cas12a的策略,已成為分子診斷中的強大工具。然而,仍存在兩個主要挑戰(zhàn):dsDNA對嚴(yán)格原間隔序列(PAM)的依賴性以及發(fā)夾雜交產(chǎn)生的背景信號泄漏。在此,我們報道了一種基于磁珠的平臺,該平臺通過轉(zhuǎn)錄介導(dǎo)crRNA的重組和Cas12a的激活,從而實現(xiàn)超靈敏的miRNA檢測。目標(biāo)分子觸發(fā)的CHA組裝從三個最初鎖定的發(fā)夾(H1、H2和H3)動態(tài)構(gòu)建了一個T7轉(zhuǎn)錄模板,該模板不僅轉(zhuǎn)錄出支架RNA,還與其自身產(chǎn)物雜交形成DNA/RNA復(fù)合物,從而激活Cas12a。將分裂的T7啟動子與CHA結(jié)合有效地抑制了背景信號,提高了檢測靈敏度。此外,磁珠增加了局部濃度和反應(yīng)動力學(xué),共同顯著提升了檢測靈敏度。此外,專為轉(zhuǎn)錄驅(qū)動的Cas12a設(shè)計的crRNA組裝策略不僅規(guī)避了傳統(tǒng)的PAM依賴性dsDNA激活途徑,還實現(xiàn)了無需額外激活劑的自我供應(yīng)crRNA。我們證明了該生物傳感器對miRNA-21的檢測具有出色的靈敏度,達到了65.3 aM的檢測限。此外,通過準(zhǔn)確量化細(xì)胞系和人血清中的目標(biāo)水平,初步驗證了該方法的實用性。我們的方法提供了一種具有變革潛力的可行解決方案,旨在應(yīng)對當(dāng)代診斷應(yīng)用中的復(fù)雜挑戰(zhàn)。
引言
微小RNA(miRNA)是作為基因表達關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子的小型非編碼RNA(Gebert和MacRae,2019)。異常的miRNA表達水平與多種惡性腫瘤密切相關(guān),使得miRNA成為疾病診斷的非常有前景的生物標(biāo)志物(Winkle等人,2021)。然而,傳統(tǒng)的miRNA檢測方法,如微陣列(Schaudy等人,2022)、Northern印跡(Choi等人,2017)和定量逆轉(zhuǎn)錄實時聚合酶鏈反應(yīng)(qRT-PCR)(Jet等人,2021),通常受到復(fù)雜儀器、訓(xùn)練有素的操作人員和繁瑣操作程序的限制。最近,成簇規(guī)律間隔短回文重復(fù)序列(CRISPR)和CRISPR相關(guān)(Cas)蛋白受到了廣泛關(guān)注,并發(fā)展成為多個領(lǐng)域的開創(chuàng)性生物技術(shù)工具,包括轉(zhuǎn)錄調(diào)控(McCarty等人,2020;Qin等人,2025;Yang等人,2022)和分子診斷(Green等人,2022;Hu等人,2025)。特別是CRISPR/Cas12a系統(tǒng)由于其高效的轉(zhuǎn)錄切割活性而成為miRNA檢測的主流平臺,該活性在特定目標(biāo)分子激活下無差別地降解周圍的單鏈DNA(ssDNA)(Chen等人,2018;Xiao等人,2025;Zhao等人,2024)。然而,未經(jīng)預(yù)擴增步驟的情況下,CRISPR/Cas12a系統(tǒng)對miRNA的檢測靈敏度嚴(yán)重受限,僅達到皮摩爾(pM)水平(Huyke等人,2022;Ramachandran和Santiago,2021),這阻礙了基于Cas12a的生物傳感器發(fā)展成為通用檢測平臺的發(fā)展。
為了解決這些限制,研究方向集中在通過工程化crRNA和引入等溫擴增來提高CRISPR/Cas12a的性能。一方面,多項研究探索了通過各種方法修改crRNA以調(diào)節(jié)Cas12a的活性,包括延長crRNA長度(Liu等人,2025b)、光控技術(shù)(Li等人,2024)和分裂crRNA(Zeng等人,2025)。然而,這些策略的實際應(yīng)用往往受到技術(shù)和經(jīng)濟挑戰(zhàn)的阻礙。復(fù)雜的crRNA結(jié)構(gòu)不僅成本高昂,還可能對Cas12a的轉(zhuǎn)錄切割活性產(chǎn)生不利影響。另一方面,當(dāng)結(jié)合等溫擴增時,Cas12a的靈敏度顯著提高,等溫擴增包括酶介導(dǎo)和非酶介導(dǎo)的方法。酶介導(dǎo)的等溫擴增技術(shù),如重組酶聚合酶擴增(RPA)(Liu等人,2025a)和環(huán)介導(dǎo)的等溫擴增(LAMP)(Pan等人,2025),通過擴增特定目標(biāo)序列顯著提高檢測靈敏度。最近,體外轉(zhuǎn)錄擴增作為一種強大策略出現(xiàn),這得益于可編程轉(zhuǎn)錄開關(guān)的發(fā)展,允許在體外精確和動態(tài)地控制RNA輸出(Gupta和Krieg,2024;Lee等人,2024;Xiong等人,2024;Yoon等人,2022)。Wang等人開發(fā)了一種基于CRISPR的方法,利用轉(zhuǎn)錄擴增自我供應(yīng)crRNA以激活Cas12a,并實現(xiàn)了miRNA檢測(Wang等人,2020)。然而,該系統(tǒng)未能將轉(zhuǎn)錄和Cas12a激活集成到一步中,這使得操作流程復(fù)雜化并延長了總檢測時間。作為回應(yīng),非酶方法如CHA和HCR引起了廣泛關(guān)注,作為穩(wěn)健的替代方案(Jia等人,2022;Peng等人,2020),主要通過擴增激活劑與crRNA的結(jié)合來激活Cas12a。然而,非酶電路從根本上受到核酸探針隨機擴散的限制,經(jīng)常導(dǎo)致反應(yīng)動力學(xué)緩慢和背景信號升高(Liu等人,2019;Xu等人,2022;Zhao等人,2025)。為了緩解這一問題,研究人員采用了復(fù)雜的空間限制和目標(biāo)富集策略(Bao等人,2025;Ma等人,2025;Qing等人,2020)。例如,Sui等人使用的球形DNA納米結(jié)構(gòu)創(chuàng)建了一個高濃度的納米級反應(yīng)環(huán)境,顯著提高了局部碰撞頻率和反應(yīng)效率,產(chǎn)生了用于Cas12a的特異性dsDNA激活劑(Sui等人,2025)。然而,這些先進配置通常需要外源性引入Cas12a激活劑,從而增加了系統(tǒng)的復(fù)雜性并可能影響實用性。因此,基于Cas12a策略的快速動力學(xué)和實驗簡便方法的發(fā)展仍然是一個重大挑戰(zhàn)。
在此,我們構(gòu)建了一種新型生物傳感器,稱為磁珠限制的CHA介導(dǎo)的模板激活CRISPR/Cas12a系統(tǒng)(MB-CHA@TA-CRISPR/Cas12a系統(tǒng)),用于miRNA的檢測。目標(biāo)miRNA觸發(fā)CHA電路自組裝成一個完整的T7轉(zhuǎn)錄模板,該模板被轉(zhuǎn)錄成支架RNA,與模板的粘性末端雜交形成功能性crRNA,最終激活Cas12a的轉(zhuǎn)錄切割活性。該設(shè)計將分裂的T7啟動子與基于磁珠的CHA結(jié)合,有效抑制非特異性轉(zhuǎn)錄,最小化背景噪聲,同時對低豐度miRNA實現(xiàn)高靈敏度。轉(zhuǎn)錄模板組裝策略不僅介導(dǎo)支架RNA的轉(zhuǎn)錄,還作為Cas12a的激活劑,從而簡化了實驗程序。該策略成功應(yīng)用于miRNA的檢測,并用于準(zhǔn)確分析不同腫瘤細(xì)胞系和人血清樣本中的miRNA-21水平。此外,將這種方法與側(cè)向流式檢測(LFA)結(jié)合,展示了其在臨床診斷中的潛在應(yīng)用。
材料與試劑
所用材料和試劑的描述見支持信息。所有寡核苷酸序列列于表S1和S2中。
CHA介導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄模板
首先,將單鏈發(fā)夾H1、H2和H3稀釋并在95°C下熱退火5分鐘,然后逐漸冷卻(1°C/分鐘)以促進發(fā)夾形成。隨后加入1 μL H1、H2、H3(每種10 μM)、不同濃度的1 μL miRNA-21、14 μL DEPC處理的水和2 μL NEB2.1緩沖液(100 mM Tris-HCl,pH 7.5,500 mM...)
MB-CHA@TA-CRISPR/Cas12a系統(tǒng)的工作原理
鑒于miRNA-21在多種癌癥中異常過表達的臨床相關(guān)性(Yan等人,2023),所提出的MB-CHA@TA-CRISPR/Cas12a檢測方法利用CHA生成的轉(zhuǎn)錄模板來激活Cas12a進行檢測。工作原理如圖1所示。在這個設(shè)計中,整個反應(yīng)過程可以分為兩個功能模塊。第一個模塊在目標(biāo)識別后觸發(fā)CHA激活,組裝一個完整的T7啟動子轉(zhuǎn)錄...
結(jié)論
總結(jié)來說,我們建立了一種基于磁珠富集CHA的生物傳感器,用于介導(dǎo)Cas12a的模板激活,從而實現(xiàn)miRNA的高靈敏度檢測。這種級聯(lián)擴增過程由CHA啟動,隨后通過轉(zhuǎn)錄進行,再通過磁珠濃縮反應(yīng)組分,實現(xiàn)了檢測靈敏度的協(xié)同增強。CHA介導(dǎo)的完整T7啟動子的形成有效防止了非特異性轉(zhuǎn)錄...
CRediT作者貢獻聲明
潘明曦:數(shù)據(jù)整理、方法學(xué)、撰寫——原始草稿。呂夢梅:資源獲取、監(jiān)督、驗證。倪銀剛:項目管理、軟件。蘇梅:正式分析、研究。趙成軍:研究、驗證。梅如宇:研究。英展明:概念化、資金獲取、資源管理、監(jiān)督、撰寫——審稿與編輯。
利益沖突聲明
作者聲明他們沒有已知的競爭性財務(wù)利益或個人關(guān)系可能影響本文所述的工作。
致謝
本工作得到了國家自然科學(xué)基金(21974041)、湘潭大學(xué)研究經(jīng)費(21QDZ08)、湖南省自然科學(xué)基金(2023JJ30579)和湖南省衛(wèi)生健康委員會科技項目(20255620)的支持。