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        當前位置:首頁 > 今日動態 > CRISPR技術
        • AMPKα2 T172磷酸化激活決定骨骼肌運動表現與能量轉導

          本研究旨在闡明AMPKα2 T172磷酸化激活在骨骼肌功能和代謝中的關鍵作用。針對過往基因敲除模型可能破壞蛋白化學計量學并導致補償性適應的問題,研究者利用CRISPR-Cas9技術構建了Ampkα2 T172A(無法磷酸化激活)基因敲入小鼠模型。研究發現,Ampkα2(而非Ampkα1)T172磷酸化的缺失會導致小鼠體脂增加、耐力運動能力下降,并損害骨骼肌線粒體最大呼吸與電導。通過整合多組學(蛋白質組/磷酸化蛋白質組/代謝組)分析,該研究系統揭示了Ampkα2 T172激活對糖酵解與氧化代謝、線粒體呼吸及收縮功能的廣泛而關鍵的調控作用,其蛋白質組變化與2型糖尿病患者骨骼肌變化顯著重疊。這些發現表明,靶向AMPKα2 T172激活可能成為改善運動能力及治療2型糖尿病等代謝疾病的潛在策略。

          來源:SCIENCE ADVANCES

          時間:2026-02-27

        • 特定SLC25轉運體調控線粒體蛋白合成:代謝物轉運與線粒體功能整合機制的新解析

          線粒體如何協調胞質代謝以維持其自身基因表達,仍是未解之謎。為解決此問題,研究人員開展了針對SLC25家族線粒體代謝物轉運蛋白與線粒體蛋白合成之間關系的研究。他們通過全基因組CRISPR篩選鑒定出四個關鍵轉運蛋白(SLC25A25、A44、A45、A48),并證實其功能缺失會損害線粒體翻譯、OXPHOS(氧化磷酸化)功能與線粒體形態,揭示了代謝物轉運缺陷直接影響線粒體蛋白合成的全新機制,強調了代謝與線粒體基因表達的內在聯系。

          來源:SCIENCE ADVANCES

          時間:2026-02-27

        • 綜述:線粒體基因組編輯工具:在動物育種中的前景

          線粒體基因組編輯技術為動物育種提供新途徑,涉及CRISPR-free蛋白編輯系統開發、突變體動物模型構建及經濟性狀關聯研究,需解決編輯精度與安全倫理問題。

          來源:Journal of Genetics and Genomics

          時間:2026-02-27

        • 一種由Fe?O?@AuNPs納米酶驅動的自維持CRISPR-Cas12a/bio-電容生物測定方法,用于超靈敏的現場檢測甘蔗黑穗病:機制與應用

          sugarcane smut檢測開發了一種整合CRISPR/Cas12a、SDA擴增、Fe3O4@AuNPs納米酶催化和生物電容器的自持便攜式生物傳感平臺,實現41.56 aM超靈敏檢測,線性范圍0.0001-100 pM,特異性強且穩定性高,適用于精準農業和現場診斷。

          來源:Computers and Electronics in Agriculture

          時間:2026-02-27

        • 綜述:精密工程淀粉:整合代謝工程與無細胞合成生物學技術,以實現可持續的生物塑料和功能性食品的開發

          淀粉生物合成工程與合成生物學技術用于優化淀粉分子結構及功能,提升其在食品包裝、生物基材料等領域的應用。通過CRISPR精準編輯GBSS、SBE及DBE等關鍵酶基因,調控直鏈/支鏈淀粉比例、鏈分布及磷酸化,改善結晶性、熱穩定性和阻水性。細胞外合成生物學平臺可快速生產高純度工程淀粉。研究整合代謝工程、多組學分析及AI設計工具,建立從基因編輯到材料性能的閉環開發體系,推動淀粉從傳統農產向可編程生物材料轉型。

          來源:Carbohydrate Polymers

          時間:2026-02-27

        • 線粒體通透性轉換孔(mPT)核心激活因子鑒定:NLRX1為鈣超載誘導線粒體膜通透性增加的關鍵蛋白

          本文通過表型CRISPR篩選,在人類細胞中系統性地鑒定出線粒體通透性轉換(mPT)的關鍵調控因子。研究發現,線粒體基質蛋白NLRX1是鈣超載誘導mPT激活的必需因子,而此前提出的內膜整合蛋白候選物并非必需。該工作為理解缺血再灌注(IR)損傷等疾病中的細胞死亡機制提供了新的分子靶點。

          來源:Proceedings of the National Academy of Sciences

          時間:2026-02-26

        • 截短型WRKY蛋白通過SlWRKY16-CIP2b-SlSYP121調控模塊增強野生番茄抗旱性研究

          本研究通過鑒定番茄SlWRKY16基因中一個與抗旱性密切相關的單核苷酸多態性(SNP)突變,發現該突變導致產生功能缺失的截短型SlWRKY16蛋白,進而增強植物抗旱性。研究系統揭示了SlWRKY16通過物理互作抑制轉錄因子CIP2b(CONSTANS Interacting Protein 2b)的活性,并直接負調控下游靶基因SlSYP121(SYNTAXIN OF PLANTS 121)的表達,從而抑制活性氧(ROS)清除能力。而CIP2b通過結合SlWRKY16,減弱其對SlSYP121的轉錄抑制,形成一個核心調控模塊。該工作不僅闡明了一個連接WRKY與NF-Y轉錄因子家族的、新的抗旱分子通路,也為利用關鍵自然變異位點進行番茄抗旱分子育種提供了重要靶點和理論依據。

          來源:Plant Biotechnology Journal

          時間:2026-02-26

        • 這位生物工程師將食物廢棄物轉化為高級美食

          真菌發酵技術通過CRISPR基因編輯手段,將農業廢棄物轉化為高營養價值食品,如素食奶酪、植物基飲料,并與米其林廚師合作提升風味與呈現效果,推動可持續食品系統發展。

          來源:ACS Central Science

          時間:2026-02-26

        • 、和三重突變導致斑馬魚軟鰭條結構轉變,為棘狀鰭條進化提供新線索

          本研究通過對斑馬魚hoxa13a、hoxa13b和hoxd13a基因進行組合突變,揭示了Hox13基因在硬骨魚軟鰭條發育中的關鍵作用。三重突變體幾乎所有鰭(除尾鰭外)的鰭條均表現出長度縮短、骨節關節與分叉消失、鰭條末端缺乏類肌動纖維(actinotrichia)以及半鰭條(hemiray)骨化增厚等表型,使其形態上更接近于棘鰭魚(Acanthomorphs)的棘狀鰭條(spiny rays)。分子層面,突變導致背鰭和臀鰭原基(primordia)中grem1b表達下調以及alx4a表達域相對擴張,這些變化與棘鰭魚棘狀鰭條發育過程中的基因表達模式相似。研究表明,hoxa13a和hoxa13b對正常軟鰭條形成的貢獻大于hoxd13a,并提示hox13基因表達的缺失可能是硬骨魚進化過程中軟鰭條向棘狀鰭條轉變的重要遺傳機制。

          來源:PLOS Genetics

          時間:2026-02-26

        • 牙齦卟啉單胞菌CRISPR陣列30.1:調控細菌毒力與宿主免疫應答的新樞紐

          (推薦語)本研究首次揭示牙齦卟啉單胞菌(Porphyromonas gingivalis)中一個不編碼的CRISPR陣列(30.1)作為核心調控因子,通過靶向自身基因組位點,抑制細菌生物膜形成、毒力及代謝通路,同時調控巨噬細胞的炎癥反應。該發現拓展了CRISPR-Cas系統的傳統免疫防御認知,為理解牙周病致病機理及開發靶向CRISPR的抗菌干預策略提供了新視角。

          來源:Microbiology Spectrum

          時間:2026-02-26

        • 基于CRISPR-Cas9的體內DNA動員擴增平臺(ACTIMOT)激活微生物隱性生物合成基因簇的策略

          本研究旨在解決微生物基因組中大量隱性生物合成基因簇(BGCs)難以被表達和利用的問題。研究人員受天然基因轉移系統啟發,開發了名為ACTIMOT的CRISPR-Cas9基體內DNA動員與擴增平臺,成功將大型BGCs從細菌染色體轉移至復制型質粒上。該策略高效激活并放大了隱性BGCs,極大提升了產物產量,并發現了四個新天然產物家族,從而解鎖了隱藏的微生物生物合成潛力。

          來源:BIOspektrum

          時間:2026-02-26

        • 無需DNA修飾的CRISPRa dRNPs技術:精準激活內源基因以調控細胞命運

          本文介紹了一項前沿技術:無需基因組編輯的CRISPRa dRNPs方法。研究人員為突破精確激活內源基因的技術瓶頸,探索了DNA-free CRISPRa核糖核蛋白(dRNPs)的應用。研究表明,該技術能實現瞬時、多路復用的基因激活,并能可控地調控細胞狀態,這對于未來基礎研究與潛在的應用轉化具有重要意義。

          來源:BIOspektrum

          時間:2026-02-26

        • CRISPRgenee:一種整合基因敲除與表觀沉默的雙向導RNA系統,加速功能缺失效應

          本文作者針對標準CRISPRko或CRISPRi方法在實現功能缺失效應時存在的速度、效能與sgRNA間變異性問題,介紹了一種名為CRISPRgenee的新型雙向導RNA系統。該系統通過同時進行基因敲除與表觀遺傳學沉默,協同增強了功能缺失效應,加速了基因耗竭,并降低了sgRNA間的變異性,從而為針對困難靶點的高分辨率遺傳篩選提供了更強大的工具。

          來源:BIOspektrum

          時間:2026-02-26

        • 綜述:植物染色體數目的定向改變

          CRISPR/Cas介導的植物基因組編輯技術成功用于重構染色體,首次通過將擬南芥(Arabidopsis thaliana)的整條染色體臂轉移并融合,使其染色體數目從10條減少至8條,驗證了植物對染色體數目變化的強適應性。

          來源:BIOspektrum

          時間:2026-02-26

        • CRISPR/Cas9技術敲除OsSPS基因會損害水稻(Oryza sativa L.)的糖分分配和生長能力

          水稻OsSPS1和OsSPS2基因敲除導致糖代謝紊亂、光合效率下降及產量降低,證實其調控糖分配和生殖發育的關鍵作用。

          來源:Plant Biotechnology Reports

          時間:2026-02-26

        • 蛋氨酸合酶正向調控植物對RNA和DNA病毒的廣譜抗性及其作物育種應用前景

          本文推薦一篇關于植物廣譜抗病毒機制的重要原創研究。研究發現,蛋氨酸合酶(MS)通過與多種植物病毒的基因沉默抑制子(VSR)互作,干擾其功能,從而在單子葉和雙子葉作物中均能正向調控對多種RNA和DNA病毒的抗性,這為通過基因工程培育廣譜抗病毒作物提供了一個極具前景的新靶點。

          來源:Plant Biotechnology Journal

          時間:2026-02-25

        • CSRP2通過PRC1復合物調控PDGFRA/PI3K/AKT通路促進膠質瘤惡性進展的機制研究

          為解決膠質母細胞瘤(GBM)預后差、間質亞型尤為侵襲的臨床挑戰,研究人員聚焦于間質富集基因CSRP2,探究其在膠質瘤進展中的功能與表觀遺傳調控機制。通過多組學分析與功能實驗,研究者發現CSRP2高表達并與不良預后相關,其通過協同PRC1復合物(BMI1/RNF2)調控PDGFRA啟動子表觀狀態,維持下游PI3K/AKT信號傳導,從而驅動腫瘤生長。這項研究揭示了CSRP2作為促癌因子與PDGFRA轉錄調控的新關聯,為膠質瘤治療提供了潛在的生物標志物與干預靶點。

          來源:Cellular Oncology

          時間:2026-02-25

        • CD4+T細胞內源性IL-6:Th17分化的關鍵驅動因子及其介導的效應器抗性的新機制

          這篇原創性研究論文揭示了CD4+T細胞自身產生的白介素-6(IL-6)在Th17細胞分化與功能中的核心作用。研究通過CRISPR-Cas9基因敲除技術證明,T細胞內源性IL-6不僅是Th17分化和產生IL-17A所必需的,還賦予其對CD8+T細胞介導的抑制的抵抗能力。有趣的是,外源性IL-6無法替代此功能,而IL-21則可繞過對IL-6的需求。這些發現為靶向IL-6/IL-21軸治療自身免疫病提供了新見解。

          來源:European Journal of Immunology

          時間:2026-02-25

        • 一種無需擴增的基于CRISPR/Cas13a的電化學生物傳感器,利用RNA-3Ag?探針在金多孔晶格納米電極上檢測循環腫瘤RNA

          循環腫瘤RNA(ctRNA)作為早期癌癥診斷敏感標志物,但其快速高靈敏度檢測技術尚未突破。本研究首次開發CRISPR/Cas13a系統與銀離子介導RNA探針結合的Au多孔晶格納米電極(APLNE)電化學傳感器,通過Ag?-C鏈式復合物形成強信號探針,經CRISPR切割后信號銳減,實現KRAS G12D ctRNA檢測限0.5 fM,20分鐘完成檢測,兼具環保性和臨床應用潛力。

          來源:Journal of Biological Engineering

          時間:2026-02-25

        • 綜述:根結線蟲管理策略的現狀、進展及新興CRISPR/Cas生物技術應用

          本文系統評述了根結線蟲(RKNs)的傳統及新興管理策略,重點介紹了革命性的CRISPR/Cas基因組編輯工具在培育抗線蟲植物中的應用,為可持續農業害蟲防控提供了精準高效的分子育種新思路。

          來源:Functional & Integrative Genomics

          時間:2026-02-25


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